Étude génétique des Odonates

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L’extraction de pattes par exemple, chez les Odonates est réputée comme une méthode non destructive, non létales et qui ne perturbe pas la vie des spécimens (Watts & al. 2007a, 2007b, Monroe & al. 2010). Elle n’a notamment pas d’impact sur les recaptures des individus (Watts & al. 2006). Le pattes chez les Odonates sont capables de régénération dans une certaine proportion : 42% dans le cas d’une étude de Coenagrionidae selon Saxton & al. (2020). Des prélèvements réalisés sur des échantillons très anciens (collections ou musées) ou sur des exuvies (Watts & al. 2005, Haring & al. 2021, Sittenthaler & al. 2023) donnent de bons résultats pour les études génétiques. L’étude de l’ADN environnemental (ADNe) permet aussi d’accéder aux inventaires des Odonates dans une certaine mesure (Barnes & al. 2014).

Protocole simple pour le prélèvement de pattes d’Odonates sur le terrain

L’éthanol absolu (au moins égal à 95°, non dénaturé de préférence) est idéal. pour préserver l’intégrité de l’ADN. L’Isopropanol (au moins égal à 90°) reste une alternative lorsque le premier produit n’est pas disponible (Boohmann & al. 2018). La conservation se fait dans des tubes Eppendorf (1,5 à 2 ml) hermétiques, complètement remplis d’alcool afin de diminuer l’action de l’oxygène qui pourrait dégrader l’ADN. Le stockage peut se faire à température ambiante pour de l’alcool à 95°, idéalement à conserver au réfrigérateur à 4°C, voire même à -20°C au congélateur pour des stockages de longue durée en laboratoire. Les pattes prélevées sont à mettre directement dans l’alcool, sans nettoyage préalable, en évitant tout séchage, cause de dégradation de l’ADN. L’étiquetage se fait à l’extérieur du tube, voire directement dans le tube si on utilise du papier imperméable. Il s’agit de coder les individus, désigner l’espèces présumée, le lieu de capture repérée par GPS de préférence, la date et le nom du préleveur (Hajibabaei & al. 2005, Watts & al. 2007, Rykkn & al. 2007), un fichier adéquat peut servir à simplifier l’étiquetage. Afin de documenter le prélèvement, des photographies du spécimens faites rapidement afin de limiter le stress et de l’habitat seront utiles.

Les conditions légales, notamment protection des espèces ou des sites doivent être considérées avant tout prélèvement.

  • Barnes M.A. & al. 2014 – Environmental conditions influence eDNA persistence in aquatic systems. – Environ. Sc. Technol., 48 : 1819–1827. – doi
  • Boohmann K. & al. 2018 – The effect of ethanol concentration on the morphological and molecular preservation of insects for biodiversity studies. – PeerJ., 6.
  • Haring E. & al. 2021 – DNA barcoding of exuviae for species identification of Central European damselflies and dragonflies (Insecta : Odonata). – J. of Insect Conservation, 27.
  • Monroe E.M. & al. 2010 – Nonlethal Tissue Sampling Techniques and Microsatellite Markers Used for First Report of Genetic Diversity in Two Populations of the Endangered Somatochlora hineana (Odonata : Corduliidae). – Annals of the Entomological Society of America, 103 (6) : 1012-1017. – ONLINE – doi
  • Saxton N.A., Powell G.S. & Bybee S.M. 2020 – Prevalence of leg regeneration in damselflies reevaluated : A case study in Coenagrionidae. – Arthropod Structure & Development, 59.
  • Sittenthaler M. & al. 2023 – DNA barcoding of exuviae for species identification of Central European damselflies and dragonflies (Insecta : Odonata). – J. of Insect Conservation, 27 : 435-450. – ONLINE
  • Watts C. & al. 2005 – Exuviae as a reliable source of DNA for population-genetic analysis of odonates. – Odonatologica, 34 (2) : 183–187. – ONLINE
  • Watts C. & al. 2006 – Population structure and the impact of regional and local habitat isolation upon levels of genetic diversity of the endangered damselfly Coenagrion mercuriale (Odonata : Zygoptera). – Freshwater Biology, 51 : 193-205.
  • Watts C. & al. 2007a – Compatible genetic and ecological estimates of dispersal rates in insect (Coenagrion mercuriale : Odonata : Zygoptera) populations. – Molecular Ecology, 16 : 737-751.
  • Watts C. & al. 2007b – How useful is DNA extracted from the legs of archived insects for microsatellite‑based population genetic analyses ? – J. of Insect Conservation, 11 (3) : 195-198.